بررسی تاثیرقارچ Monosporascus cannonballus روی شاخصه های رشدی بوته های طالبی و خربزه

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسنده

مربی پژوهش، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور، بخش تحقیقات بیماریهای گیاهی، تهران، ایران.

چکیده

بیماری پوسیدگی ریشه و زوال بوته‫های خربزه و طالبی بر اثر Monosporascus cannonballus از مهمترین بیماریهای این گیاهان به ویژه در مناطق گرم و خشک کشور محسوب می گردد. این بیمارگر در اوایل فصل رشد بوته های طالبی و خربزه را آلوده نموده و باعث پوسیدگی ریشه و به دنبال آن کاهش وزن اندامهای هوایی در بوته های حساس می شود. اگرچه میزان تاثیر این پوسیدگیها در کاهش شاخصه های رشدی ژنوتیپهای مختلف طالبی و خربزه نیاز به بررسی بیشتری دارد. در این بررسی، زادمایه قارچ بر روی 10 ژنوتیپ مختلف خربزه و طالبی (سمسوری، جلال، سوسکی، شاه آبادی، احمدی، مینو، زرد محلی، مشهدی، گرمسار و ریش بابا) مایه‫زنی گردید. بوته‌های مایه زنی شده پس از 4 و 32 روز نگهداری در گلخانه در دمای 2±27 درجه سانتیگراد از خاک خارج و وجود یا عدم وجود قارچ در بوته‌های مایه‫زنی شده با استفاده از پرایمر اختصاصی این بیمارگر مورد بررسی قرار گرفت. علاوه بر این، وزن ریشه‌ها و اندامهای هوایی گیاهان مایه‌زنی شده نیز پس از 45 روز اندازه گیری شد. اگرچه وجود قارچ عامل بیماری در کلیه بوته‌های مایه‫زنی شده با استفاده از آغازگرهای اختصاصی محرز گردید، بین ژنوتیپها از نظر وزن ریشه و اندامهای هوایی اختلاف معنی داری مشاهده شد. بیشترین کاهش وزن ریشه در ژنوتیپ‌های سوسکی، سمسوری، گرمسار و زرد محلی به ترتیب 05/72، 28/67، 43/62 و 60/54 درصد و کمترین آن در ژنوتیپ‌هایی مانند مینو و مشهدی با بترتیب 25/22 و 10/27 درصد بود. بیشترین کاهش وزن اندام های هوایی با 92/61، 64/58، 75/53 و 27/52 درصد به ترتیب مربوط به ژنوتیپ‌های شاه آبادی، زرد محلی، احمدی و سوسکی بوده و کمترین کاهش در ژنوتیپ هایی مانند مینو و مشهدی با 56/15 و 20/21% اندازه گیری شد. بر اساس وزن تر ریشه‫ها، اندام‌های هوایی و نیز کل گیاه ژنوتیپ‫های مشهدی و مینو کمترین و ژنوتیپ‫های شاه آبادی و سوسکی بیشترین میزان آلودگی را داشتند. 

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Impact of Monosporascus cannonballus on growth parameters of melon plants

نویسنده [English]

  • V. Cheraghali
چکیده [English]

In hot and arid areas, root rot and vine decline of melon plants caused by Monosporascus cannonballus is considered as one of important diseases in Iran. The pathogen infects melon plants at early growth stages and causes root rot followed by a decrease in root and vine weight in susceptible melons. However, the effect of the pathogen on plant growth parameters needs further research. In this study, one of pathogenic isolate of M. cannonballus was inoculated to 10 different genotypes of muskmelon and cantaloupe locally named: Samsoori, Jalal, Sooski, Shahabadi, Ahmadi, Minoo, Zard-e-Mahali, Mashhadi, Garmsar and Rish baba. The inoculated plants were kept at 27 ± 2 °C for 4 and 32 days before they were examined for the existence of the pathogen using species specific primers. In addition, root and vine fresh weights of inoculated plants were measured after 45 days. Although the pathogen was detected in all samples using molecular markers, a significant difference was observed in the weight of root and vine of the genotypes. Root weight reduction maxima were recorded for Sooski, Samsoori, Garmsar and Zard-e-Mahali as 72.05, 67.28, 62.46 and 54.60% respectively and the minima were recorded for Minoo and Mashhdi as 22.25 and 27.10% respectively. The vine reduction weight of Shahabadi, Zard-e-Mahalli, Ahmadi and Sooski were 61.92, 58.64, 53.75 and 52.27 and those of Minoo and Mashhadi were measured as 15.96 and 21.20%. Based on the fresh weight of root, shoot and total plant, Mashhadi and Minoo genotypes were more resistant compared with Shah Abadi and Suski genotypes.
 

کلیدواژه‌ها [English]

  • vine decline
  • Resistant cultivars
  • muskmelon
  • cantaloupe
  • Monosporascus cannonballus
  1. Bruton B D, Garcia-Jimenez J, Armengol J and Popham, T W. 2000. Assessment of virulence of Acremonium cucurbitacearum and Monosporascus cannonballus on Cucumis melo. Plant Disease 84: 907–913.
  2. Cohen R, Pivonia S, Shtienberg D, Edelstein M, Raz D, Gerstl Z and Katan J. 1999. Efficacy of fluazinam in suppression of Monosporascus cannonballus the causal agent of sudden wilt of melons. Plant Disease. 83: 1137–1141.
  3. Cohen R, Pivonia S, Burger Y, Edelstein M, Gamliel A and Katan J. 2000. Towards intergrated management of Monosporascuse wilt of melon in Israel. Plant Disease 84: 496–505.
  4. Crosby K M. 2000. Impact of Monosporascuse cannonballus on root growth of diverse melon varieties and their F1 progeny in the field. Subtropical plant Science 52: 8–11.
  5. Crosby K M. 2001. Screening Cucumis melo L.agrestis germplasm for resistance to Monosporascus cannonballus Subtropical plant Science 53: 24–26.
  6. Edelstein M, Cohen R, Burger Y, Shriber S, Pivonia S and Shtienberg D. 1999. Integrated management of sudden wilt in melons, caused by Monosporascus cannonballus, using grafting and reduced rates of methyl bromide. Plant Disease 83: 1142–1145.
  7. Martyn R D and Miller M E. 1996. Monosporascus root rot and vine decline: An emerging disease of melons worldwide. Plant Disease 80: 716–725.
  8. Martyn R D. 2002. Monosporascus root rot and vine decline of melons. The Plant Health Instractur. D0I:10.1094/PHI-I-2002-0612-01
  9. Murata J and Ohara K. 1936. Prevention of watermelonFusarium wilt by grafting Lagenaria [in Japanese]. Japanese Journal of Phytopathology 6: 183–189.
  10. Pico B, Roig C, Fita A and Nuez F. 2008. Quantitative detection of Monosporascus cannonballus in infected melon roots using real-time PCR. European Journal of plant pathology 120: 147–156.
  11. Pivonia S, Gerstl  Z, Maduel A, Levita  R, Cohen  R. 2010. Management of Monosporascuse sudden Wilt of melon by soil application of fungicides. European Journal of plant pathology 128: 201–209.
  12. Pollack F G and Uecker F A. 1974. Monosporascus cannonballus an unusual ascomycete in cantaloupe roots. Mycologia 66: 346–349.
  13. Sarpeleh A and  Sonbolkar A. 2002. Isolation of Monosporascuse Cannonballus from cantaloupe and musekmelon in Iran. Paper Presented at: 15th Iranian Plant Protection Congress; 26–30 september; Kermanshah, Iran.
  14. Sarpeleh A, Cheraghali V and Razavi M. 2012. Detection of Monosporascus cannonballus from melon plants using PCR. Crop Protection 1: 349–359.
  15. Sarpeleh A. 2008. The role of Monosporascus cannonballus in melon collapse in Iran. Australasian Plant Disease Notes 3: 162–164.
  16. Tinlin R D. 1997. Multiple infection of subcrown internodes of wheat (Triticum aestivum) by common root rot fungi. Canadian Journal of Botany 55: 30–34.
  17. Troutman J L and Matejka, J C. 1970. Three fungi associated with cantaloupe roots in Arizona. Phytopathology 60: 1317.
  18. Wolf D and Miller M. 1998. Tolerance to Monosporascus root rot and vine decline in melon (Cucumis melo L.) germplasm . Hortsciencem 33: 287–290.